一、實(shí)驗(yàn)?zāi)康?br/>
掌握植物cDNA合成的原理和方法

二、實(shí)驗(yàn)原理

反轉(zhuǎn)錄酶主要用于體外cDNA的合成。目前最chang用的反轉(zhuǎn)錄酶(reverse transcriptase)有SuperscriptII、M-MLV和AMV等。它們具有依賴于RNA或DNA的DNA聚合酶活性和RNaseH酶活性，可以以RNA分子為模板，合成出一條DNA鏈。形成的DNA是與RNA模板互補(bǔ)的，因而反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)生的DNA分子稱之為cDNA。

三、實(shí)驗(yàn)材料、器具及藥品

植物總RNA溶液。紫外分光光度計、離心機(jī)、冰盒、口罩、手套、EP管架、超凈工作臺、移液器、DEPC處理過的槍頭、EP管等。5×M-MLV RT Buffer、2.5mM dNTP mix、RNase抑制劑(30U/µL)、M-MLV Reverse Transcriptase、Oligo(dT)18 primer、無菌的DEPC水等。

四、實(shí)驗(yàn)步驟

注意：戴手套進(jìn)行以下操作，嚴(yán)防RNase污染。

1．在超凈工作臺上吸取1ml無菌水到EP管中,加入2µl植物總RNA溶液,充分混勻，在紫外分光光度計上測定260,280nm的光吸收值(OD值),然后計算RNA的濃度,并分析其純度。

分光光度（紫外吸收）法
（1）預(yù)熱紫外分光光度計10—20分鐘。
（2）取兩只比色杯，一只裝入1ml H2O溶液，作為空白溶液，用來校正分光光度計零點(diǎn)及調(diào)整透光度至100。
（3）DNA純度及濃度測定：
①取2ul DNA或RNA樣品加入另一比色杯，加dH2O至1000ul,混勻。
②將兩只比色杯置分光度計中，調(diào)入射光波長，分別用空白溶液調(diào)整零點(diǎn)（T為100，OD為0），測定待測樣品液在260nm、280nm、230nm的OD值。
③計算濃度：對于雙鏈DNA 1.0 OD260=50ug/ml,
對單鏈RNA1.0 OD260=40ug/ml。
④測定純度：v純的RNA溶液其OD260/OD280的比值應(yīng)介于1.7至2.0，OD260/OD230的比值應(yīng)大于2.0。?RNA樣品OD260/OD280的比值太小，說明有蛋白或苯ben酚污染。比值大于2.0，則可能被異硫氰酸胍污染。?OD260/OD230的比值小于2.0時表明有小分子及鹽存在。
純的DNA溶液其OD260/OD280應(yīng)為1.8，OD260/OD230應(yīng)大于2.0。
?OD260/OD280大于1.9時，表明有RNA污染，小于1.6時表明有蛋白質(zhì)或酚污染。
?OD260/OD230小于2.0時，表明溶液中有殘存的鹽和小分子雜質(zhì)，如核苷酸、氨基酸、酚等。

2．在DEPC處理過的Ep管中加入約4µg總RNA和1µl 0.5µg/µl的Oligo(dT)18 primer,小心混勻,70℃保溫5分鐘,立即浸入冰水中。

3．按次序分別加入下列試劑：
5µl 5×M-MLV RT Buffer
2µl dNTP mix(2.5mM)
1µl RNase抑制劑(30U/µL)
1µl M-MLV Reverse Transcriptase
然后加DEPC水到25µl.

4．小心混勻，室溫離心5秒，將所有溶液收集到管底，37℃保溫1小時。

5．90℃處理5分鐘，冰上冷卻。

6．用于PCR擴(kuò)增或-20℃保存?zhèn)溆?